血清成份復(fù)雜，里面包含抑制分化的因子，也包含促進分化的因子；間充質(zhì)干細胞一類成體干細胞大多可以用血清培養(yǎng)，單能干細胞，用血清不會分化；胚胎干會細胞分化。

血清的刺激分化主要與血清品質(zhì)相關(guān)，品質(zhì)高的可以維持干細胞增殖，抑制分化；品質(zhì)較低的如新生牛血清會誘導(dǎo)分化；與生產(chǎn)批次也有關(guān)系，不同批次因子含量不一，分化效果不一。

? 篩選品質(zhì)高的血清批次；

? 添加抑制分化的因子，如bFGF，EGF等；

? 及時傳代，控制密度，刺激增殖，高密度會引起分化；

? 及時換液，防止代謝累積，刺激分化；

? 控制培養(yǎng)基質(zhì)量如內(nèi)毒素、支原體、pH等等，控制環(huán)境穩(wěn)定。

細胞密度高的時候，消化3~4 min 才能完-全消化下來，細胞高密度下生長速度快，低密度下細胞增殖慢甚至死亡，建議傳代比例控制在1:2~1:4，不要超過1:4。

細胞分化了之后是不會再增殖的。細胞分化實驗前期，細胞還能緩慢增殖，但隨著實驗的進展，漂浮的細胞越來越多，這時候要分不同的情況處理：

? 如果實驗前，細胞長得過滿，可能因為接觸抑制產(chǎn)生較多漂浮細胞。這種情況下，只要貼壁的細胞沒有受到影響，實驗可以繼續(xù)；

? 另一種情況，是實驗開始時的密度合適，實驗開始后，貼壁的細胞慢慢脫落漂浮，這種情況是不正常的，需要結(jié)合實驗前細胞狀態(tài)、實驗所用的誘導(dǎo)試劑對細胞的影響等多方面的因素去調(diào)整。

正常培養(yǎng)的細胞系是沒有梯度離心這個概念的，梯度離心通常是用于細胞提取時，多種細胞混合在一起的一種分離措施。懸浮細胞培養(yǎng)的過程中會始終伴隨著細胞的死亡，細胞死亡后裂解就會產(chǎn)生碎片。這種可以通過低速離心（800 rpm，3~5 min）去除一部分，但無法完-全去除。

懸浮細胞需要計數(shù)來判斷。貼壁細胞可以看不同視野下細胞的密度，以大多數(shù)視野下的密度為準。需要注意的是，不是所有細胞都會平鋪單層，有些細胞可能會堆疊生長，比如Hep G2。

THP-1是一類單核細胞，可以在特定的情況下分化為M0型的巨噬細胞，這時的細胞就是會貼壁的。培養(yǎng)的過程中如果發(fā)現(xiàn)細胞出現(xiàn)了貼壁的情況，傳代的時候可以只收集漂浮的細胞。同時排查實驗室的環(huán)境、培養(yǎng)基、血清等，看看有沒有什么特定的影響因素導(dǎo)致細胞貼壁。

細胞培養(yǎng)傳代次數(shù)多了，會存在狀態(tài)越來越差的情況?？梢栽诩毎麪顟B(tài)好的時候，一邊傳代，一邊凍存。NK-92細胞有很強的IL-2依賴性，培養(yǎng)時要注意避免過度吹打，團塊吹散的同時，細胞也容易受損。培養(yǎng)過程中，一方面需要注意及時添加IL-2，一方面也需要注意吹打次數(shù)，一般輕輕吹2~3下將大團吹成小團就可以了。

需要結(jié)合具體的細胞及圖片具體分析。如果是一些有成脂能力的細胞，不排除是細胞培養(yǎng)的過程中受到某種刺激分化形成了脂滴。除此以外，還需要排除器皿本身的影響。最后結(jié)合顯微鏡下的圖片及視頻進行判斷，看是否有明顯微生物的痕跡。如果上述方法都無法判斷，必要時，可以收集細胞培養(yǎng)液置于37℃培養(yǎng)箱進行空培養(yǎng)，觀察是否有明顯的微生物增殖。

細胞復(fù)蘇后老化，可能是因為細胞凍存前的狀態(tài)不佳，以及凍存時的保存活性效果不好，這些都會影響細胞狀態(tài)，其中凍存損傷影響比較常見。建議控制凍存前狀態(tài)、控制凍存過程及凍存液確保細胞活率。

一般誘導(dǎo)效果好，脂滴大，相差顯微鏡白光可以觀察到油滴，可能會存在誤判，建議使用標準檢測方法，用油紅O染色方法鑒定。

懸浮細胞通常是當(dāng)天按實驗所需細胞量接種細胞，后續(xù)配置轉(zhuǎn)染復(fù)合物，將轉(zhuǎn)染復(fù)合物滴加到培養(yǎng)基中，根據(jù)摸索好的轉(zhuǎn)染時間，收樣檢測。

設(shè)置好分組，空白對照、陰性對照、陽性對照、DNA、siRNA、DNA和siRNA共轉(zhuǎn)染（用無血清培養(yǎng)基稀釋DNA和siRN及DNA，無血清培養(yǎng)基稀釋轉(zhuǎn)染試劑），摸索適宜的濃度、比例、轉(zhuǎn)染時間。

大多數(shù)懸浮細胞培養(yǎng)時都會聚團，還有些懸浮細胞本身就是聚團長的，不聚團說明細胞活性較差，如NK-92細胞。培養(yǎng)本身是聚團生長的懸浮細胞，是不可以減少細胞團的。如果是存在少數(shù)聚團，大部分單顆懸浮的細胞，可以將細胞進行高密度培養(yǎng).一般密度在200萬/mL時，細胞大部分是單顆分散的。

這是一株對營養(yǎng)要求較高的懸浮細胞，培養(yǎng)的時候需要添加β-巰基乙醇。如果細胞剛復(fù)蘇就生長緩慢，可以先用臺盼藍染色檢測細胞的活性。如果是復(fù)蘇時生長狀態(tài)較好，但傳代后生長緩慢，可能是培養(yǎng)基的營養(yǎng)不夠，比如沒有加β-巰基乙醇等。另外，細胞不增殖可能與接種時的密度太低有關(guān)。懸浮細胞培養(yǎng)是有密度要求的，一般情況下密度控制在50-200萬/mL為佳，密度太低了，細胞增殖緩慢，密度太高了，細胞可能會慢慢裂解死亡。